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An osmotic remedial allele, gal 7-1, in the galactose pathway of Saccharomyces cerevisiae responds to either penetrating (ethylene glycol and diethylene glycol) or nonpenetrating (KCl, NaCl, and sorbitol) solutes in the growth medium. Extracts from cells grown under restrictive conditions gave no increase in enzyme activity (gal-1-phosphate, uridylyl transferase) when exposed to the penetrating solutes; thus protein synthesis or possibly polymer assembly is proposed as the critical step remedied by the addition of the solutes.  相似文献   
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Reverse-phase high-performance liquid chromatography was utilized to separate efficiently and rapidly a standard mixture of various radiolabeled O-methylated mannitols and O-methylfucitol commonly encountered when vertebrate asparagine-linked oligosaccharides are subjected to permethylation, hydrolysis, and reduction with NaBH4. The following reduced, radioactive O-methylhexitols were resolved: 2,4-, 3,4-, and 3,6-di-O-methylmannitols; 3,4,6-tri-O-methylmannitol, 2,3,4-tri-O-methylfucitol, and 2,3,4,6-tetra-O-methylmannitol. To demonstrate the utility of this separation method in the analysis of metabolically radiolabeled asparagine-linked oligosaccharides, mouse lymphoma BW 5147 cells were metabolically radiolabeled with [2-3H]mannose and their glycopeptides prepared by Pronase digestion and fractionated by serial chromatography on immobilized lectins. Each fraction was subjected to methylation and hydrolysis, the released monosaccharides were reduced, and the radioactive O-methylhexitols were separated by reverse-phase HPLC. The relative amounts of the O-methylhexitols in each glycopeptide fraction analyzed were similar to those values determined by a combination of other separation systems.  相似文献   
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